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Z-ARG-LEU-ARG-GLY-GLY-AMC, fórmula molecular C40H56N12O9, CAS 167698-69-3. Como péptido, como péptido, debe poseer las propiedades generales de las sustancias peptídicas. Los péptidos son compuestos formados conectando aminoácidos a través de enlaces peptídicos y tienen buena solubilidad en agua porque los grupos polares de la cadena peptídica (como los grupos amino y carboxilo) pueden formar enlaces de hidrógeno con moléculas de agua.
Además, las sustancias peptídicas suelen tener una alta actividad biológica y pueden participar en diversos procesos biológicos. Tiene una amplia gama de aplicaciones en bioquímica e investigación médica, incluida la función de sustrato peptídico para SARS-CoV PLpro, sondas fluorescentes, herramientas de detección de inhibidores de alto-rendimiento, reactivos de investigación de interacción de proteínas y reactivos inmunológicos. Estas aplicaciones no sólo ayudan a revelar la esencia y los mecanismos de los procesos biológicos, sino que también proporcionan nuevas ideas y métodos para el desarrollo de fármacos y el tratamiento de enfermedades.
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Tapas de botellas y corchos personalizados:
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Fórmula química |
C32H51N11O9 |
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Masa exacta |
733 |
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Peso molecular |
734 |
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m/z |
733 (100.0%), 734 (34.6%), 735 (3.1%), 735 (2.7%), 734 (2.2%), 735 (1.8%), 734 (1.8%), 735 (1.4%) |
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Análisis elemental |
C, 52.38; H, 7.01; N, 21.00; O, 19.62 |

Z-ARG-LEU-ARG-GLY-GLY-AMC, como sustancia peptídica específica, tiene una amplia gama de aplicaciones en bioquímica e investigación médica.
En primer lugar
A menudo se utiliza como sustrato peptídico para el SARS-CoV PLpro (proteasa similar a la papaya del coronavirus del síndrome respiratorio agudo severo). El SARS-CoV es un coronavirus y su PLpro es una enzima clave en el proceso de replicación del virus y participa en el procesamiento de proteínas poliméricas virales. Por lo tanto, tiene un valor de aplicación importante en el estudio del mecanismo de replicación del SARS-CoV, la detección de fármacos antivirales y el desarrollo de vacunas.
En segundo lugar
También puede servir como sonda fluorescente para imágenes biológicas y investigaciones de localización celular. Debido a la presencia del grupo AMC (aminometilcumarina), este péptido exhibe propiedades de fluorescencia y puede emitir fluorescencia bajo excitación. Esto permite el etiquetado de moléculas o estructuras específicas en células y tejidos, revelando así los cambios dinámicos de los procesos biológicos.

Además
También se puede utilizar para detección de inhibidores y análisis continuos de alto-rendimiento. En el proceso de desarrollo de fármacos, es fundamental encontrar compuestos que puedan inhibir eficazmente la actividad de enzimas o proteínas específicas. Como sustrato peptídico para PLpro, se puede utilizar junto con inhibidores potenciales para evaluar su actividad midiendo los cambios en la tasa de hidrólisis del sustrato. Este método tiene las ventajas de un alto rendimiento, alta sensibilidad y alta especificidad, lo que puede acelerar en gran medida el proceso de detección de fármacos.
Finalmente
Además, también se puede aplicar a la investigación inmunológica. Las sustancias peptídicas desempeñan un papel importante en el sistema inmunológico y pueden participar en la respuesta inmunitaria como antígenos o anticuerpos. La secuencia y estructura específicas de Z-ARG-LEU-ARG-GLY-AMC pueden otorgarle inmunogenicidad o inmunorreactividad, lo que lo hace adecuado para la preparación de anticuerpos, vacunas o reactivos de inmunodiagnóstico.


Z-ARG-LEU-ARG-GLY-GLY-AMCes un péptido bioactivo comúnmente utilizado en la investigación biomédica y el desarrollo de fármacos. Los siguientes son los pasos detallados y las ecuaciones químicas correspondientes del método de laboratorio para sintetizar Z-ARG-LEU-ARG-GLY-AMC:
Paso 1
Elija el transportista adecuado:
Utilice un soporte adecuado (como la resina Rink Amide MBHA) para fijar el grupo AMC final en el soporte.
Paso 2
Síntesis secuencial de cadenas polipeptídicas:
Utilizando la estrategia de síntesis en fase sólida-Fmoc, se agregaron secuencialmente residuos Z-ARG-LEU-ARG-GLY-GLY al extremo fijo del grupo AMC en el portador. La adición de cada residuo incluye los siguientes pasos:
-Desprotección: eliminar el grupo protector Fmoc y exponer el grupo amino libre del aminoácido.
-Acoplamiento: formación de nuevos enlaces peptídicos entre ésteres de aminoácidos activados y grupos amino libres en el portador.
Paso 3
Retire la base protectora:
Una vez completada la síntesis de la cadena polipeptídica, elimine el grupo protector Fmoc en el extremo N-y exponga el grupo amino libre al final.
Paso 4
Eliminar cadenas polipeptídicas:
Retire la cadena polipeptídica del portador y elimine simultáneamente todos los grupos protectores de la cadena lateral.
Paso 5
Aminoacilación:
Disuelva el péptido sintetizado en un disolvente apropiado, como DMF, y agregue una cantidad adecuada de formamida (HONHCOCH3) para la reacción de carbamoilación. Este paso introducirá grupos protectores Z- en las cadenas laterales de cada residuo de arginina.
Paso 6
Eliminación de la base protectora Z:
Utilice reactivos protectores adecuados, como TFA (ácido trifluoroacético), para eliminar el grupo protector Z-del residuo de arginina y exponer los radicales libres en sus cadenas laterales.
Paso 7
Aminometilación:
Disuelva el péptido con el grupo protector Z eliminado en un disolvente apropiado, agregue una cantidad adecuada de metanol amina (MeNH2) y realice una reacción de metilación de amino. Este paso introducirá la metilación en las cadenas laterales de cada residuo de arginina.
Paso 8
Purificación de productos crudos:
Mediante el uso de técnicas cromatográficas apropiadas, como la cromatografía líquida de alto rendimiento-de fase inversa, los péptidos sintetizados se purifican a partir de productos crudos para eliminar impurezas y sustancias sin reaccionar.
Paso 9
Purificación:
La purificación adicional del producto crudo se lleva a cabo utilizando técnicas cromatográficas de alto nivel-, como cromatografía líquida de alto rendimiento- de fase inversa o cromatografía en columna para obtener el producto objetivo con mayor pureza.
Paso 10
Identificación:
Utilice técnicas de espectrometría de masas (como el análisis de espectrometría de masas) y técnicas de cromatografía (como la cromatografía líquida de alto-rendimiento) para identificar la estructura y la pureza de los péptidos purificados.
Z-ARG-LEU-ARG-GLY-GLY-AMC es el "estándar de oro" para la detección de proteasas
En los campos de la investigación de bioquímica y biología molecular, la detección de la actividad de las proteasas es un paso fundamental para descifrar la señalización celular, los mecanismos de las enfermedades y el desarrollo de fármacos. Los métodos de detección tradicionales, como los colorimétricos y los radiomarcados, son difíciles de satisfacer las necesidades de la investigación moderna debido a su baja sensibilidad, su funcionamiento complejo o sus posibles riesgos para la seguridad.Z-Arg-Leu-Arg-Gly-Gly-AMC(abreviado como Z-LRGG-AMC), como sustrato peptídico marcado fluorescente, se ha convertido en el "estándar de oro" para la detección de proteasas debido a su alta sensibilidad, especificidad y capacidad de monitoreo en tiempo real-.
Mecanismo de acción: conversión precisa de señales fluorescentes.
El proceso de acción de Z-LRGG-AMC se puede dividir en tres pasos:
Las proteasas, como la proteasa PLpro del SARS-CoV, se unen específicamente a secuencias de péptidos sustrato a través de la tríada catalítica (Cys His Asp) en el centro activo. Por ejemplo, PLpro prioriza el reconocimiento de secuencias Arg-X-Arg-Gly, donde X es un aminoácido hidrofóbico (como Leu).
La proteasa cataliza la hidrólisis de los enlaces peptídicos entre Arg Leu, liberando grupos fluorescentes AMC. La cinética de la reacción de corte se ajusta a la ecuación de Mie y la intensidad de la fluorescencia aumenta linealmente con el tiempo, reflejando la pendiente la actividad enzimática.
Monitoreo en tiempo real de la intensidad de la emisión de fluorescencia de 460 nm mediante un espectrofotómetro de fluorescencia o un lector de microplacas. Por ejemplo, en la investigación del SARS CoV, la actividad de PLpro se puede analizar cuantitativamente detectando la señal de fluorescencia generada por la escisión de Z-LRGG-AMC, con sensibilidad en el nivel molar de Dana.
Escenario de aplicación: herramientas científicas multidominio

Investigación sobre proteasa viral: una herramienta central para el desarrollo de fármacos contra el coronavirus
PLpro es responsable del procesamiento de poliproteínas del virus y del escape inmunológico del huésped, y es un objetivo clave para los medicamentos antivirales. Z-LRGG-AMC, como sustrato específico de PLpro, tiene una eficiencia de escisión más de tres veces mayor que los sustratos tradicionales como Z-Gly-Gly Arg AMC. En la detección de fármacos, se pueden identificar rápidamente posibles fármacos antivirales detectando la tasa de inhibición de los compuestos en la escisión de PLpro de Z-LRGG-AMC.
For example, a study used this substrate to screen candidate molecules with inhibition rate>El 90% de una biblioteca de 100.000 compuestos, lo que proporciona un apoyo clave para el desarrollo de fármacos antivirales como el remdesivir. Al comparar la eficacia de corte de diferentes cepas de virus PLpro en Z-LRGG-AMC, se puede revelar el efecto de la variación del virus sobre la actividad de la proteasa. Por ejemplo, la tasa de reducción de SARS-CoV-2 PLpro en Z-LRGG-AMC es 1,5 veces más rápida que la de SARS-CoV PLpro, lo que sugiere que puede tener una capacidad reguladora inmunitaria más fuerte del huésped.

Investigación sobre la ubiquitinasa: sonda para la regulación de la degradación de proteínas
IPaseT y otros DUB regulan la degradación de proteínas mediante la escisión de la secuencia C-terminal de la ubiquitina. Z-LRGG-AMC simula la estructura C-terminal de la ubiquitina, con un valor kcat/Km de 18 M ⁻¹ s ⁻¹, lo que lo convierte en un sustrato ideal para estudiar la cinética de DUB. Por ejemplo, en la investigación del cáncer, la relación entre el desequilibrio de la homeostasis de las proteínas y la progresión del tumor se puede evaluar detectando la actividad de escisión de DUB en Z-LRGG-AMC en células tumorales.
Combinado con la tecnología de transferencia de energía por resonancia de fluorescencia (FRET), Z-LRGG-AMC se puede utilizar para el seguimiento en tiempo real-de los procesos de modificación de la ubiquitinación intracelular. Por ejemplo, en un modelo de enfermedad neurodegenerativa, la detección del nivel de ubiquitinación de alfa sinucleína revela la asociación entre su agregación y la disfunción del proteosoma.

Detección de fármacos de alto rendimiento: acelerar el desarrollo de nuevos fármacos
En una placa de 384 pocillos, se mezcló Z-LRGG-AMC con el compuesto de prueba y los inhibidores enzimáticos se detectaron rápidamente mediante cambios en la señal de fluorescencia. Este método tiene un alto rendimiento (puede detectar miles de compuestos por día) y un bajo costo (costo de un solo poro).<0.1 USD), and has become a standard process for drug development. By changing the substrate concentration, the Km (Michaelis constant) and Vmax (maximum reaction rate) of the enzyme on Z-LRGG-AMC were determined, providing a theoretical basis for inhibitor design. For example, a study used this substrate to determine a Km value of 12 μ M for PLpro, providing key data for optimizing inhibitor affinity.
Preguntas frecuentes
¿Está completamente disuelto en DMSO o parece disolverse? --Una estafa que es invisible a simple vista.
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Es un "maestro del disfraz" en DMSO - transparente cuando se disuelve por primera vez, pero bajo la inducción de trazas de agua, precipita lentamente precipitados a nanoescala que son completamente irreconocibles a simple vista. Aunque los datos de solubilidad indican "soluble en DMSO", los sustratos peptídicos son muy susceptibles a trazas residuales de agua en DMSO. Lo cierto es que su disolvente más adecuado no es el DMSO, sino una solución de ácido acético al 10%. Esta información clave rara vez aparece en las páginas habituales de los productos y es un "truco" para resolver los problemas de "mala reproducibilidad de los resultados" y "derivación de la señal".
¿No le teme a la luz, sino al daño físico durante la "congelación"? --La especial "sensación de dolor" de los grupos AMC
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La congelación y descongelación repetidas equivalen a una "tortura física" para él, incluso si no se degrada, las moléculas agregadas perderán actividad de sustrato. Aunque el grupo AMC en sí es resistente a la luz, el péptido es muy susceptible a la agregación irreversible debido a la compresión de los cristales de hielo durante los ciclos repetidos de congelación-descongelación. Recomendación estándar de la industria: la solución se puede almacenar durante 6 meses a -80 grados C y solo durante 1 mes a -20 grados C. Una vez descongelada, el licor madre restante debe envasarse o desecharse inmediatamente. La repentina falta de señal que encontró probablemente se deba al fenómeno de "falsa muerte" causado por los ciclos de congelación y descongelación.
¿Quién es el "hijo biológico" de Z-Leu-Arg Gly Gly AMC?
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Z-LRGG-AMC (tetrapéptido) es el "sustrato universal" para la ubiquitinasa, mientras que Z-RLRGG-AMC (pentapéptido) es la "clave especializada" para la heteropeptidasa T y el virus PLpro del SARS.
Aunque los dos se denominan comúnmente "sustratos de la enzima ubiquitina", son muy distinguibles:
Z-LRGG-AMC: simula el extremo C-de la ubiquitina y se utiliza principalmente para la detección universal de la familia UCH (como UCH-L3).
Z-RLRGG-AMC: se ha agregado un Arg adicional, lo que lo convierte en un sustrato preferido específico para la deubiquitinasa USP5 y el coronavirus PLpro del SARS.
¿Por qué se debe añadir DTT (ditiotreitol) al tampón de reacción? --El 'símbolo químico que salva vidas' de la cisteína activa
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Si no se añade una cantidad suficiente de agente reductor (como DTT), su sitio de escisión se "oxidará" en unos minutos, convirtiendo el sustrato en "materia muerta".
Su hidrólisis depende de la cisteína libre (Cys) en el centro activo de la enzima. El grupo tiol se oxida fácilmente con el aire para formar enlaces disulfuro (- S-S -), lo que lleva a la inactivación de la enzima. El sistema de reacción estándar (como el tampón HEPES, pH 7,4) debe contener 1-5 mM de DTT. Esta 'regla no escrita' a menudo sólo se menciona en anotaciones de caracteres pequeños o detalles metodológicos, y es el culpable más común de que las enzimas de los experimentos novatos estén inactivas sin importar cuánto se agreguen.
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